Biochemische Arbeitstechniken sind Voraussetzung!
Im Vorlesungsverzeichnit steht schon einiges!!
EDIT: Sorry, ich hab versehentlich das der Chemiker reinkopier, jetzt stimmts
UE Biochemisches Praktikum (Parallelkurs) - (für Ernährungswissenschafter, Teil der Biochemischen Übungen)
Studienprogrammleitung Ernährungswissenschaften
6 Stunde(n), 6,0 ECTS credits
Prüfungsimmanente Lehrveranstaltung
Unterrichtssprache: Deutsch
Kapitel:33.01
152
Gruppe 1:
Manfred Hüttinger , Alfred Rapp , Nina-Kaori Zemann
Praktikumssaal 1,2und 3 des Inst.Med.Chemie; nähere Info unter:
http://homepage.univie.ac.at/manfred.hue...rition.htm
Online-Anmeldung von 13. September 2010 bis 18. Oktober 2010
Anmeldung zur LV über UNIVIS
UNIVIS-Anmeldezeitraum von 13. September 2010, 08:00 Uhr bis 18. Oktober 2010, 09:00 Uhr
Beschränkte Teilnehmerzahl, max. 60
Blocklehrveranstaltung
Weitere Informationen
Gruppe 2:
Hans Goldenberg , Clemens Röhrl , Sabine Schreier
Info unter:
http://homepage.univie.ac.at/manfred.hue...ition.html
Online-Anmeldung von 13. September 2010 bis 18. Oktober 2010
Anmeldung zur LV über UNIVIS
UNIVIS-Anmeldezeitraum von 13. September 2010, 08:00 Uhr bis 18. Oktober 2010, 09:00 Uhr
Beschränkte Teilnehmerzahl, max. 60
Blocklehrveranstaltung
Inhalte: Allgemeines Verhalten im Labor, Führung von Protokollen; Datenerfassung und Auswertung, Fehlerquellen, zufällige und systematische Fehler, Streuung, Pr.: Statistische Analyse photometrischer Messserien (Mehrfachbestimmung), Statistische Erhebung der Präzision; Chromatographischen Methoden, Pr.: Dünnschichtchromatographie von Aminosäuren, Molekularsieb-Gelchromatographie, Entsalzung eines Proteins durch Gelfiltration; Elektrophoretische Trennungen, Pr.: Serumproteinelektrophorese, DNA-Gelelektrophorese (Trennung von PCR-Amplifikaten und Restriktionsverdauen); Proteinanalytik, Pr.: Bestimmung des isoelektrischen Punktes einer Casein- bzw. Albuminlösung, Gesamt-Proteinbestimmung im Serum; Spektroskopie, Photometrie, Enzymdiagnostik, Pr.: Bestimmung der Michaelis-Menten-Konstante, Ermittlung der Sättigungskonzentration und der maximalen Umsatzgeschwindigkeit (Auswertung mittels Kurvenanpassung am PC), Enzymatische Ethanolbestimmung und Einfluss von Hemmstoffen, (statistische Auswertung am PC), Amylaseaktivität im Serum, Lipasebestimmung, Glucosebestimmung in normalen und hyperglykämischen Proben mittels Reflocheck; Immunologische Methoden, Pr.: Nachweis von Milchallergen mittels ELISA, Isotopen-Markierung und Nachweismethoden; Pr.: Hormonstatus T3, T4, FT3, FT4 durch Radioimmunassay; Osmose, Diffusion, Dialyse, Pr.: Erythrocytenhämolyse in hyper/iso/hypo-tonen Lösungen; Molekularbiologie, cDNA-Klonierung, Produktion von Proteinen mittels Gentechnik-Methoden, Pr.: DNA-Isolierung aus Gemüse, Nachweis von GVO Konstrukten in Nahrungsextrakten mit Polymerasekettenreaktion; Nachweis der Einbauorientierung eines in Bluescript klonierten DNA Stückes; Theorie und Praxis der Zentrifugation, Zellkulturtechniken, Mikroskopie;
Methoden: Praktikum
Ziele: Erfahrung aneignen wie Daten produziert und evaluiert werden, Entwicklung und Erfahren der Durchführung praktischer Arbeitsschritte, Interpretation der Ergebnisse, Kennenlernen einiger Standardprozeduren im Biochemischen Labor
Art der Leistungskontrolle: immanent, Protokollführung und Auswertung der Experimente
Literatur: special script
Everything has its beauty but not everyone sees it.
Confucius
